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动脉相关论文范文检索,与新乡医学院文修改润色审批表相关论文提纲
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《实验动物与比较医学杂志》论文模版
李颖1,苗海卫1,黄成磊,乔伟伟2,罗心平1,梁旺3,李剑1,朱军1,沈伟1,金波1,施海明1
(复旦大学1.附属华山医院,上海200040,2.实验动物科学部,上海200032,3教育部分子医学重点实验室,上海200032)
①姓名之间加逗号,单位序号标在右上角,②单位前面有序号(如:1.),③单位后面有逗号城市名及邮编
[摘 要](加方括号,内容按结构式四要素格式书写)目的在新西兰兔股动脉粥样硬化血管狭窄模型建立中运用白介素-1β,探讨其可行性并与既往造模方法进行比较.方法新西兰兔通过局部股动脉包裹白介素-1β,后行高脂饲料饲养,建立动脉粥样硬化血管狭窄模型.在X线透视下经颈动脉行股动脉球囊损伤,评判造模前后的股动脉血流分级(TIMI)评分,管腔内径,以及血管内膜厚度和泡沫细胞阳性面积的变化.结果与高脂对照模型组比较,该模型组的股动脉管腔内径显着狭窄(P<,0.001).同时,血管内膜泡沫细胞阳性面积率显着增多(P<,0.05).结论运用白介素-1β建立股动脉粥样硬化血管狭窄模型具有可行性,操作简便,可控程度高,易重复.与既往模型相比,更有助于进一步阐明炎症介导的动脉粥样硬化斑块的机制.
[关 键 词](加方括号,有3～5个关 键 词,之间加分号隔开)动脉粥样硬化,白介素-1β,新西兰兔
[中图分类号]Q95-33查阅中国图书分类法
[文献标识码]A[文章编号]1674-5817(2016)01-0000
EstablishmentofAngiostenosisModelonNewZealandRabbitonBasisofInterleukin-1β LIYing1,MIAOHai-wei1,HUANGCheng-lei1,QIAOWei-wei2,LUOXin-ping1,LIANGWang3,LIJian1,ZHUJun1,SHENWei1,JINBo1,SHIHai-ming1
(1.HuashanHospital,FudanUniversity,200040,China
2.DepartmentofLaboratoryAnimalsciencee,FudanUniversity,200032,China
3.KeylaboratoryofMolecularMedicine,MinistryofEducation,FudanUniversity,200032,China)
格式同中文,但姓全大写,名的第一个字母大写,按第三人称,被动态写作！！
[Abstract]ObjectiveToestablishanangiostenosismodelonNewZealandrabbitonthebasisofInterleukin-1βandevaluatethemodelparedwithtraditionalanimalmodel.MethodsThefemoralarterywerewrappedwithInterleukin-1βbeadsonNewZealandrabbitsandthantheanimalswerefedwithhighcholesteroldiettoestablishtheangiostenosismodel,endotheliumthickness,foamcellareaweredetermined,andTIMIwasmonitored.ResultComparedwiththecontrastgroup,angiostenosismodelgrouppresentssignificantstenosisofthefemoralartey,andthickeningoftheendotheliumandincreasingofthepositiveareaoffoamcells.ConclusionTheangiostenosismodel,whichisaccuratelycontrolledandeasilyrepeated,couldbeusedtoevaluatethemechanismoftheplaqueoninflammationcorrelatedtotheprogressofatherosclerosis.
[Keywords]Atherosclerosis,Interleukin-1β,NewZealandrabbits,
血管动脉粥样硬化的病变机制,主要与斑块增生,炎症反应,斑块破裂,血栓形成相关.理想的动脉粥样硬化动物模型,为进一步探索血管动脉粥样硬化的病理生理变化,提供研究依据,同时为药物应用到心血管疾病提供临床前的重要保障.目前,动脉粥样硬化动物模型主要集中于血管内皮损伤模型以及血栓模型的建立.同样,通过了解慢性炎症变化在动脉粥样硬化增生发展中的作用,本文作者运用白介素-1β炎症介导方式,自血管外膜到血管内膜,进行炎症反应调节,建立新西兰兔股动脉粥样硬化血管狭窄模型,从而为研究的动脉粥样硬化病理生理变化提供新的途径.
1材料与方法
1.1动物分组与饲养—动物信息必须齐全！！！
2～3月龄雄性新西兰白兔40只,体质量2.0～2.5kg,由上海陈行实验用兔繁育有限公司提供[SCXK(沪)2002-0016](动物必须来源清楚,有生产许可证号SCXK),分成4组,(1)普通饲料喂养组:6只,普通饲料每日50g/kg,饲养10周,(2)高脂饲料对照组:10只,高脂饲料每天50g/kg喂养10周后处死.高脂饲料含有1%胆固醇,8%猪油和91%普通饲料,(3)球囊损伤斑块模型组:12只,高脂饲料饲养8周后,在X线透视下,经颈动脉入路球囊损伤右侧股动脉.术后再高脂饲养2周后再次行股动脉造影后处死,(4)白介素-1β(IL-1β)包裹斑块模型组:12只,局部股动脉包裹白介素-1β,后行高脂饲料饲养10周后,行股动脉造影后处死.(实验场所必须有使用许可证SYXK)
1.2白介素-1β筛的制备
IL-1β溶解于琼脂糖(CNB-活性琼脂糖4B,直径45~165pm,Pharmacia
DiagnosticsAB,瑞典),先后使用1mmol/L的盐酸,NaHCO3/NaCl缓冲液洗涤离心.制备IL-1β制备悬浊液.将IL-1β制备在棉筛中[1].
1.3球囊损伤与股动脉造影资料分析
IL-1β包裹斑块模型组:3%戊巴比妥钠(30mg/kg)麻醉后固定动物于平台,常规皮肤消毒,逐层分离右侧股动脉,将沾有%IL-1β包裹在股动脉周围,长度为3cm,然后局部冲洗庆大霉素后连续缝合皮肤.术后两周再次手术,分离左颈动脉并插管后注入碘必乐370造影剂8ml行双侧股动脉造影,观察到造模血管粥样斑块的变化.根据文献[2],将冠状动脉造影血流分级(thrombolysisinmyocardialinfarction,TIMI)评分的原则引用到股动脉球囊损伤前后的评估,观察实验新西兰兔股动脉的血流变化.具体如下:TIMI0级:股动脉阻塞处完全闭塞,远端无造影剂通过,TIMI1级:少量造影剂通过股动脉阻塞处,但股动脉远端不显影,TIMI2级:股动脉阻塞处完全造影.但是与正常血管相比血流较缓慢,TIMI3级:股动脉阻塞处完全造影,并且血流正常.所有动脉造影资料采用Philips公司IntegrisAllura12血管造影机软件进行定量分析.
球囊损伤斑块模型组:3%戊巴比妥钠(30mg/kg)麻醉后固定动物于平台,在X线透视下,行股动脉造影,通过TIMI评分观察股动脉球囊损伤前后的变化,和血流变化.之后使用球囊损伤股动脉内膜,损伤长度为3cm.重复上述过程共3次.退出球囊导管和钢丝,再次注入造影剂8ml行动脉造影和TIMI评分后,退出鞘管,结扎颈动脉.局部冲洗庆大霉素后连续缝合皮肤.术后两周再次手术,分离左颈动脉并插管后注入造影剂行双侧股动脉造影,观察造模血管粥样斑块的变化[3].
1.4血脂及血管组织病理检测
第1周及第8周时采集兔耳正中动脉血液,1ml置于硅化玻璃管中,25℃孵育180min,4000r/min离心10min,收集上层血清液.用自动生化检测仪(HITACHI7020AutomaticAnalyzer)检测甘油三脂(TG),胆固醇(CHOL),高密度脂蛋白胆固醇(HDL-C)和低密度脂蛋白胆固醇(LDL-C).第10周处死动物后,取出股动脉血管病变处组织,福尔马林固定后行石蜡切块,HE染色,通过IMS图像分析,测量血管内膜厚度的变化与泡沫细胞阳性面积率.
1.5统计分析------正确选用统计学方法
采用SPSS11.0软件进行统计分析.用单因素方差分析(ANVOA)进行q检验.组间比较用方差分析,对股动脉内径狭窄程度与股动脉内膜增厚程度进行相关分析.P<,0.05为差异有统计学意义.
2结果—只可叙述本文的结果(事实描述),不要有推论等内容
图表如果中英文对照,顺序按中文图注,相应文字均需中英文！！！！
2.1血脂变化
高脂饲料喂养8周后,各组新西兰兔形成高胆固醇血症(表1).
表1新西兰兔饲料喂养8周前后血脂浓度mmol/L
组别nTGHDL-CLDL-C0周8周0周8周0周8周0周8周正常组61.79±0.56a1.87±0.46a1.21±0.59a1.32±0.66a0.55±0.23a0.57±0.22a0.72±0.28a0.78±0.29a高脂组101.80±0.7827.69±3.78b1.21±0.511.64±0.81a0.56±0.331.50±0.73b0.68±0.2817.18±2.93bIL-1β组121.±0.6927.68±3.50b1.23±0.561.54±0.96a0.57±0.131.50±0.89b0.75±0.3616.17±3.62b球囊组121.75±0.9526.51±2.40b1.20±0.781.42±0.93a0.58±0.131.48±0.55b0.70±0
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